Барьер сменная кассета 6: БАРЬЕР 6 ЖЕСТКОСТЬ — сменная кассета для фильтров

Сменная кассета Барьер-6 (жесткость) 30008 — Сменные картриджи

Надежно снимает избыточную жесткость воды, при этом очищая ее от основных загрязнений — хлора и хлорорганических соединений, пестицидов, аПАВ и нефтепродуктов.

Сменная кассета «БАРЬЕР-6» предназначена для эффективного снижения жесткости воды, благодаря применению в фильтре ионообменной.

Высококачественный кокосовый активированный уголь очищает от активного хлора, органических и хлорорганических загрязнений, пестицидов, нефтепродуктов, устраняет неприятные запахи и привкусы.

Обработка активированного угля серебром предотвращает возможность размножения бактерий внутри фильтра. Высокоэффективная ионообменная смола очищает от ионов, токсичных металлов и снижает жесткость воды.

Состав кассеты:

● ионообменная смола, эффективно снижающая содержание ионов кальция и магния в воде
● кокосовый активированный уголь 
● кокосовый активированный уголь, обработанный серебром 
● герметичная резьба на кассете не позволяет нефильтрованной воде попасть в кувшин 
● использован высококачественный пищевой пластик, допущенный для контакта с питьевой водой 
● температура очищаемой воды не выше 40°С 

Эффективность очистки: хлор свободный и активный — 100%; фенол, бензол — 100%; линдан — 95-99%; ДДТ — 97-99%

Скорость фильтрации: 250-300 мл/мин

Ресурс сменной кассеты: 350 литров*

При потреблении до трех литров воды на человека в день средняя продолжительность работы одной сменной кассеты:

● для 1 человека – 90 дней
● для семьи из 2-х человек – 60 дней 
● для семьи из 3-х человек – 40 дней 
● для семьи из 4-х человек – 30 дней 
*Ресурс сменной кассеты зависит от качества исходной воды. 

В связи с нестабильным качеством водопроводной воды БАРЬЕР рекомендует менять кассету каждый месяц.

Срок службы кассеты с начала использования – не более 3-х месяцев, независимо от объема очищенной воды.

Перед началом использования:

● промойте все детали фильтра слабым мыльным раствором, ополосните водой и вытрите насухо
● вверните сменную кассету в воронку до упора 
● обязательно слейте первые 2 порции очищенной воды. В первых двух порциях возможно появление небольшого количества угольной пыли 
● наливая очищенную воду из фильтра, придерживайте рычаг воронки пальцем. 

Рекомендации:

● не используйте фильтр для очистки воды, небезопасной в микробиологическом отношении
● применяйте фильтр только по назначению 
● необходимо не реже одного раза в месяц промывать все детали фильтра слабым мыльным раствором, ополосните водой и вытрите насухо 
● не допускайте длительного нахождения фильтра под прямыми солнечными лучами 
● в случае длительных перерывов в работе фильтра (более 3-х дней) отфильтрованную воду необходимо слить, а детали фильтра протереть насухо чистым полотенцем 
● прежде чем снова использовать фильтр, повторите процедуру подготовки фильтра к работе 

Картридж для воды подходит к фильтрам-кувшинам Барьер

Тэги:
Сменная кассета Барьер-6 (жесткость)

Сменная кассета «Барьер Жесткость» (К271Р00) №6

325 руб

Экономия 35 руб

290 руб руб

за 1 шт

Способы получения товара:

• Сегодня
• Сегодня с 14:00

Способы оплаты

Товары, обозначенные на сайте значком участвуют в акции «Комплектом дешевле». Выбирайте товары, формируйте заказ, менеджер с Вами свяжется по телефону в заказе.

картридж; кувшин; ресурс фильтрующего элемента 350 л; подходит для жесткой воды; максимальная рабочая температура 40 °C; с активированным углем; умягчение; очистка от свободного хлора; высота 60 мм; длина 60 мм; ширина 140 мм; вес 150 г

Общие характеристики

Тип фильтра

кувшин

Ресурс фильтрующего элемента

350 л

Максимальная рабочая температура

40 °C

С активированным углем

да

Очистка от свободного хлора

да

Дополнительная информация

герметичная резьба

Умягчение

есть

С магнием

есть

Для жесткой воды

да

Внимание! Характеристики и комплектация товаров могут быть изменены фирмой-производителем без предварительного уведомления. Перед покупкой уточняйте важные для Вас технические характеристики и комплектацию у продавца. Если вы заметили ошибку, то пожалуйста, сообщите нам об этом.

Похожие товары

• Рекомендуемая производительность: 0.25 л/мин
• Накопительная емкость: есть

• Ресурс стандартного фильтрующего модуля: 350 л
• Накопительная емкость: есть, полный объем 1.8 л

• Тип фильтра: магистральный
• Механическая фильтрация: есть
• Очистка от свободного хлора: да
• Умягчение: есть

2 240 руб

Экономия 210 руб

2 030
руб

• Рекомендуемая производительность: 2 л/мин
• Ресурс стандартного фильтрующего модуля: 10000 л
• Накопительная емкость: нет

5 002 руб

Экономия 472 руб

4 530
руб

• Тип фильтра: магистральный
• Обезжелезивание: есть
• Очистка от свободного хлора: да
• Умягчение: есть

2 490 руб

Экономия 240 руб

2 250
руб

Персональные рекомендации

Сменная кассета Барьер Барьер КБ-6 (3шт/уп)

Внимание! Для полноценной работы сайта необходимо включить в браузере поддержку JavaScript.
Как это сделать?

Москва

Связаться с нами

Режим работы
9:00 — 21:00

• Код
  товара: 522196

В избранное

Сравнить

Коротко о товаре: Сменная кассета

Все характеристики

В избранное

Сравнить

Сменная кассета Барьер
Барьер КБ-6 (3шт/уп)

• Описание
• Характеристики
• Отзывы

• Описание
• Характеристики
• Отзывы

Барьер Барьер КБ-6 (3шт/уп) сертифицирован для продажи в России.

Сменная кассета Барьер Барьер КБ-6 (3шт/уп) – фото, технические характеристики, условия доставки по Москве и России. Для того, чтобы купить сменная кассета Барьер Барьер КБ-6 (3шт/уп) в интернет-магазине Xcom-shop.ru, достаточно заполнить форму онлайн заказа или позвонить по телефонам: +7 (495) 799-96-69, +7 (800) 200-00-69.

Изображения товара, включая цвет, могут отличаться от реального внешнего вида. Комплектация также может быть
изменена производителем без предварительного уведомления. Данное описание и количество товара не является
публичной офертой.

Заградительный пост «Легкий» | VKF Renzel

— Пожалуйста, выбери —
Афганистан

Аландские острова

Албания

американское Самоа

Андорра

Ангола

Ангилья

Антарктида

Антигуа и Барбуда

Аргентина

Армения

Аруба

Австралия

Австрия

Азербайджан

Багамы

Бахрейн

Бангладеш

Барбадос

Беларусь

Бельгия

Бенин

Бермуды

Бутан

Боливия

Ботсвана

Остров Буве

Бразилия

Британская территория Индийского океана

Бруней-Даруссалам

Болгария

Буркина-Фасо

Бурунди

Камбоджа

Канада

Каймановы острова

Центрально-Африканская Республика

Чад

Чили

Китай

Остров Рождества

Кокосовые (Килинг) острова

Колумбия

Коморские острова

Конго

Конго, Демократическая Республика

Острова Кука

Коста-Рика

Берег Слоновой Кости

Хорватия

Куба

Кипр — греческий ареал

Чехия

Дания

Джибути

Доминика

Доминиканская Респблика

Эквадор

Египет

Сальвадор

Экваториальная Гвинея

Эритрея

Эстония

Эфиопия

Фолклендские (Мальвинские) острова

Фарерские острова

Фиджи

Финляндия

Франция

Французская Полинезия

Гамбия

Грузия

Германия

Гана

Гибралтар

Греция

Гренландия

Гренада

Гуам

Гватемала

Гернси

Гвинея-Бисау

Гайана

Гаити

Остров Херд и острова Макдональд

Святой Престол (государство-город Ватикан)

Гондурас

Гонконг

Венгрия

Исландия

Индия

Индонезия

Иран

Ирак

Ирландия

Остров Мэн

Израиль

Италия

Ямайка

Япония

Джерси

Иордания

Казахстан

Кения

Кирибати

Кыргызстан

Лаос

Латвия

Ливан

Лесото

Либерия

Ливия

Литва

Люксембург

Макао

Малайзия

Мальдивы

Мали

Мальта

Маршалловы острова

Майотта

Мексика

Микронезия, Федеративные Штаты

Молдова

Монголия

Черногория

Монтсеррат

Мозамбик

Мьянма

Намибия

Науру

Непал

Нидерланды

Нидерландские Антильские острова

Новая Каледония

Новая Зеландия

Никарагуа

Нигер

Ниуэ

Остров Норфолк

Северная Корея

Северная Македония

Северные Марианские острова

Норвегия

Оман

Другая страна

Пакистан

Палау

Палестинская территория, оккупированная

Панама

Папуа — Новая Гвинея

Парагвай

Перу

Филиппины

Питкэрн

Польша

Португалия

Пуэрто-Рико

Катар

Румыния

Российская Федерация

Руанда

Святой Елены

Сент-Китс и Невис

Санкт-Люсия

Сен-Пьер и Микелон

Святой Винсент и Гренадины

Самоа

Сан-Марино

Сан-Томе и Принсипи

Саудовская Аравия

Сербия

Сейшельские острова

Сьерра-Леоне

Сингапур

Словакия

Словения

Соломоновы острова

Сомали

Южная Африка

Южная Георгия и Южные Сандвичевы острова

Южная Корея

Испания

Шри-Ланка

Судан

Суринам

Шпицберген и Ян Майен

Свазиленд

Швеция

Швейцария

Сирия

Тайвань, провинция Китая

Таджикистан

Танзания

Таиланд

Тимор-Лешти

Идти

Токелау

Тонга

Тринидад и Тобаго

Турция

Турецкая Республика Северного Кипра

Туркменистан

Острова Теркс и Кайкос

Тувалу

Уганда

Украина

Объединенные Арабские Эмираты

объединенное Королевство

Соединенные Штаты

Внешние малые острова США

Уругвай

Узбекистан

Вануату

Венесуэла

Вьетнам

Виргинские острова, Британские

Виргинские острова, СШАС.

Уоллис и Футуна

Западная Сахара

Йемен

Замбия

Зимбабве

Патент США на устройство для подачи листов бумаги в копировальный аппарат Патент (Патент №4,359,215, выданный 16 ноября 1982 г.)

ПЕРЕКРЕСТНАЯ ССЫЛКА НА СВЯЗАННОЕ ЗАЯВЛЕНИЕ

Настоящая заявка основана на заявке на патент Швейцарии 8075 / 79-5; подана в Швейцарии 7 сентября 1979 г. Испрашивается приоритет швейцарской даты подачи.

Уровень техники

Изобретение относится к устройству для подачи листов бумаги в копировальный аппарат, такой как копировальный аппарат ксерографического типа.

Было сделано множество предложений по подаче отдельных листов, которые снимаются со стопки подачи и затем подаются в копировальное устройство. Также известна подача требуемой бумаги из непрерывного рулона в копировальный аппарат. Однако непрерывная подача рулонной бумаги имеет недостаток, заключающийся в том, что различные предварительно напечатанные формы нельзя использовать в копировальном аппарате случайным образом. Ролики с намотанной на них бумагой обычно обеспечивают простую бумагу, или все формы на предварительно напечатанном рулоне одинаковы.Это ограничение копиров, у которых подача бумаги непрерывного типа осуществляется с ролика.

ОБЪЕКТЫ ИЗОБРЕТЕНИЯ

С учетом вышеизложенного целью изобретения является достижение следующих целей по отдельности или в комбинации:

, чтобы модифицировать подачу бумаги непрерывного роликового типа для копировального аппарата таким образом, чтобы подачу стопки бумаги можно было использовать в одном и том же копировальном аппарате, просто заменив один тип подачи бумаги на другой и наоборот;

, чтобы модифицировать существующие копировальные аппараты таким образом, чтобы можно было легко заменить один тип бумаги на другой с минимальными настройками, необходимыми для самого копировального аппарата; и

, чтобы использовать приводное средство, обычно имеющееся в копировальном аппарате, для приведения в действие средства продвижения листа устройства подачи листов вставного типа.

СУЩНОСТЬ ИЗОБРЕТЕНИЯ

В соответствии с изобретением предлагается устройство для подачи отдельных листов бумаги в копировальный аппарат, оборудованное для нормального приема подаваемой бумаги из рулона, содержащее средство (1) вставки, вставляемое в указанный копировальный аппарат, сменное средство поддержки стопки бумаги (4 ) в указанном средстве скольжения указанное средство поддержки стопки бумаги, содержащее подвижное дно (6) и пружинное средство, оперативно приспособленное для смещения указанного дна против веса стопки листов, покоящихся на указанном дне, средство фрикционного ролика свободного хода с положительным приводом. размещенные в указанном средстве скольжения для контакта с верхним листом в стопке, средства транспортировочного ролика, оперативно расположенные в указанном средстве скольжения после указанного средства фрикционного ролика, если смотреть в направлении продвижения подачи, для приема листа, отделенного от стопки, и средство (13) сепаратора листов, оперативно расположенное между указанным средством фрикционного ролика и указанным средством транспортировочного ролика для отделения листа от верха стопки.

Таким образом, можно выбрать подачу одного листа, например отпечатанных листов фирменных бланков или тому подобного, в копировальном аппарате, обычно подаваемом с бумажных рулонов, при этом должны выполняться лишь незначительные операции по регулировке.

КРАТКОЕ ОПИСАНИЕ РИСУНОК

Для того, чтобы можно было ясно понять изобретение, теперь оно будет описано в качестве примера со ссылкой на прилагаемые чертежи, на которых:

РИС. 1 представляет собой вид сбоку устройства подачи стопки бумаги вставного типа в соответствии с изобретением;

РИС.2 — вид сбоку нижнего конца стопки бумаги, если смотреть в направлении продвижения подачи, при этом разделительный валик находится в контакте с верхним листом стопки и собирается начать разделение листов;

РИС. 3 — вид, аналогичный виду на фиг. 2, при этом передняя кромка листа образовала выпуклость из-за того, что разделительный валик прижал переднюю кромку к разделительному средству;

РИС. 4 — вид, аналогичный виду на фиг. 2, на котором передний край верхнего бумажного листа из-за присущей ему эластичности и из-за продолжающегося толчка со стороны разделительного ролика очистил разделительное средство;

РИС.5 — частичный вид сверху средства разделения листов в виде углового разделителя; и

РИС. 6 — вид сбоку средств сцепления для приводных элементов копировального устройства.

ПОДРОБНОЕ ОПИСАНИЕ ПРЕДПОЧТИТЕЛЬНЫХ ПРИМЕРОВ ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ И НАИЛУЧШЕГО РЕЖИМА НАСТОЯЩЕГО ИЗОБРЕТЕНИЯ

Устройство служит для подачи отдельных листов в копировальный аппарат, такой как ксерографический копировальный аппарат. Для этого устройство выполнено в виде вставного блока 1, который может быть вставлен в копировальный аппарат вместо обычного вставного блока с бумагой на ролике.Полозья 2 или рельсы с роликами расположены в самой нижней зоне вставного блока 1, на котором вставной блок 1 может быть вставлен в копировальное устройство. Вставной блок 1 содержит раму с вертикальными боковыми пластинами 3. Кассета 4 коробчатого типа, которая служит для удержания стопки бумаги 7, удерживается с возможностью замены или съема в вставном блоке 1 и закрепляется в ее крайнем вставленном положении. посредством стопорного рычага или тому подобного, которое не показано, поскольку это будет тот же элемент, который обычно также блокирует выдвижной блок, несущий рулон бумаги.Кассета 4 наклонена примерно на 30 °. до 50 ° С. относительно горизонтали, предпочтительно около 35 °. Опорная пластина 6 или промежуточная пластина, которая поддерживает стопку бумаги 7, поддерживается с возможностью наклона или перемещения внутри кассеты 4 и наклонена примерно на 20-35 °. к горизонтали. Задний конец опорной плиты 6 выполнен под углом, и ее задняя концевая часть 32 опирается на опорный стержень 8, закрепленный внутри кассеты 4. Опорный стержень 8 образует ось вращения упомянутой опорной пластины 6. Опорная пластина 6 смещается в направлении стрелки A с помощью пружины 9, так что каждый раз, когда верхний лист подающей стопки 7 упирается в подающий или фрикционный ролик 10, или против набора подающих или фрикционных роликов, установленных на оси 11 поддерживается боковыми пластинами 3.Эта ось 11 приводится в движение электродвигателем 12 с помощью ремня 33, когда соответствующий сигнал включения исходит от копировального устройства или светового барьера 24. Предпочтительно, два фрикционных ролика 10, расположенных рядом с передней кромкой нарезанных листов, являются каждая снабжена фрикционной поверхностью из мягкой резины или подобного материала. Фрикционные ролики 10 расположены на расстоянии от 1 до 4 см от переднего края 34 кассеты 4.

«Разделитель углов» расположен на обоих углах переднего конца 34 кассеты 4 и выполняет функцию стопора для листов.Согласно фиг. 5, выступающий по существу треугольный угловой элемент 13 или разделительные собачки, выступающие из шпунта 14, который подвижно поддерживается вокруг горизонтальной оси в кассете 4. Угловой элемент 13 также может быть неподвижной частью на передних углах кассеты 4.

Принцип работы этого «углового разделителя» можно увидеть на фиг. 2–4. Когда по одному листу необходимо отделить от стопки 7 и транспортировать в направлении стрелки C, вращение фрикционных роликов 10 в направлении стрелки B заставляет верхний лист упираться в передняя сторона 34 кассеты 4, которая, в свою очередь, вызывает образование «выпуклости» 15, как показано на фиг.3, поскольку транспортировка этого листа сначала затрудняется угловыми элементами 13. При дальнейшем вращении фрикционным роликом или роликами 10 верхний лист 30 в конце концов прыгает вверх и через угловой элемент 3, в результате чего достигается разделение и предотвращается двойная транспортировка листов, как показано на фиг. 4. После этого лист бумаги проходит между двумя наборами транспортных роликов 18, 19, из которых по крайней мере один набор — верхний или нижний — работает вместе с электромагнитом 20 в том смысле, что когда электромагнит 20 работает При включении ролики 18 и 19 прижимаются друг к другу или к листу бумаги между двумя роликами.В состоянии покоя два транспортировочных ролика 18, 19 имеют взаимное расстояние, так что отделенный лист бумаги может беспрепятственно входить между этой щелью, в результате чего он скользит по направляющей пластине 21.

Как показано на фиг. 6, один из транспортных роликов 18 или 19 приводится в движение колесами, а дополнительная зубчатая передача, поддерживаемая с возможностью наклона, вызывает зацепление с приводными элементами копировального устройства. Согласно фиг. 6 транспортный ролик 18 или колесо на том же валу приводится в движение колесом 26.Уровень 25 шарнирно поддерживается на валу 35 этого колеса 26. Третье колесо 27, взаимодействующее с колесом 26, установлено с возможностью поворота на верхнем конце этого рычага 25. Колесо 27 вызывает сцепление сцепления с ведущими колесами копировального устройства. если блок 1 вставлен в копировальный аппарат. Таким образом, рычаг 25 может перемещаться в направлении стрелки G против воздействия пружины 28. Колеса этой муфты являются либо фрикционными, либо зубчатыми колесами. После прохождения между комплектом транспортировочных роликов 18, 19 лист бумаги попадает в направляющий канал 22, содержащий две полосы из металла или пластика.Световой барьер 24 или механический щуп, который проверяет наличие или отсутствие листа бумаги, расположен в области направляющего канала 22 или после этого направляющего канала 22. Другой световой барьер 31 определяет наличие стопка подачи 7. Для этого в основании 6 кассеты 4 предусмотрено отверстие. Световой барьер 31 подает индикацию или сигнал, если на основании 6 кассеты 4 не осталось листов бумаги.

Режим работы следующий: стопка 7 подачи отдельных листов бумаги укладывается на опорную пластину 6 кассеты 4, которая вытягивается из вставного блока, при этом передние края листов бумаги эта стопка расположена под угловым элементом 13.После этого кассета 4 вдвигается в блок 1 вставки. Электродвигатель 12 включается, так что фрикционные роликовые средства 10, обращенные фрикционным покрытием, вращаются в направлении стрелки B. Таким образом, самый верхний единственный лист бумаги проталкивается вперед через «угловой разделитель» 13 и попадает в зазор между двумя транспортными роликами 18, 19 или роликовыми наборами. Как только световой барьер 24 достигает переднего края листа бумаги, он вызывает прерывание подачи питания на электродвигатель 12, тем самым останавливая фрикционные ролики 10.Когда необходимо изготовить копию, два набора транспортных роликов 18, 19 приводятся в движение шестерней или фрикционным колесом внутри копировального устройства. Электромагнит 20 прижимает два набора транспортных роликов 18, 19 вместе, и ролик 18 приводится в движение в направлении стрелки F, так что лист бумаги, лежащий между этими транспортными роликами 18, 19, перемещается в направлении стрелки E. лист бумаги затем транспортируется дальше с помощью собственных роликов копировального аппарата и средств транспортировки известным способом.Фрикционные ролики 10 снабжены механизмом свободного вращения в том смысле, что эти фрикционные ролики 10 могут свободно вращаться вместе с движением листа бумаги, когда он вытягивается, даже когда двигатель 12 выключен. Разделительный механизм, который в данном случае выполнен как «разделители углов», располагается в пространстве между фрикционными роликами 18, 19 и фрикционным роликом 10. Как только задний конец оттянутого листа прошел мимо посредством светового барьера 24 или другого щупа происходит включение электродвигателя 12, так что другой лист вытягивается из стопки 7 подачи аналогичным образом, в результате чего упомянутая операция повторяется.

Хотя изобретение было описано со ссылкой на конкретные примерные варианты осуществления, следует понимать, что оно предназначено для охвата всех модификаций и эквивалентов в пределах объема прилагаемой формулы изобретения.

Запасная кассета для выдвижного ремня Барьерная кассета 11-футовый ремень

Доставка и возврат

Epic Solutions Worldwide LLC — Политика возврата

Вы можете вернуть большинство новых неоткрытых товаров в течение 30 дней с момента доставки для возврата за вычетом комиссии за повторное хранение в размере 25%.Пользовательские товары возврату не подлежат. Мы также оплатим стоимость обратной доставки, если возврат является результатом нашей ошибки (вы получили неправильный или бракованный товар и т. Д.). Возврат товара, который не является дефектным или с нашей ошибкой при доставке, будет оплачен на заказ. Если вы не можете найти перевозчика, сообщите нам об этом, и мы сообщим вам приблизительную стоимость доставки при возврате.

Клиенты должны уведомить Epic Solutions перед возвратом продукта и получить разрешение и соответствующий адрес для возврата.

Вы должны рассчитывать на получение возмещения в течение четырех недель с момента передачи посылки отправителю, возвращающему посылку, однако во многих случаях вы получите возмещение быстрее. Этот период времени включает в себя транзитное время, в течение которого мы получим ваш возврат от грузоотправителя (от 5 до 10 рабочих дней), время, необходимое нам для обработки вашего возврата после его получения (от 3 до 5 рабочих дней), и время, необходимое для этого. ваш банк для обработки нашего запроса на возврат (от 5 до 10 рабочих дней).

Если вам нужно вернуть товар, свяжитесь с нами, указав номер вашего заказа и подробную информацию о продукте, который вы хотите вернуть.Мы быстро ответим и предоставим инструкции по возврату товаров из вашего заказа.

Доставка

Мы можем отправить товар практически по любому адресу в мире. Обратите внимание, что существуют ограничения на некоторые продукты, и некоторые продукты не могут быть отправлены в другие страны.

Когда вы размещаете заказ, мы рассчитаем для вас даты отгрузки и доставки в зависимости от наличия ваших товаров и выбранных вами вариантов доставки. В зависимости от выбранного вами поставщика доставки, приблизительная дата доставки может отображаться на странице с расценками на доставку.

Обратите внимание, что стоимость доставки для многих товаров, которые мы продаем, зависит от веса. Вес любого такого предмета можно узнать на его странице с подробными сведениями. Чтобы отразить политику используемых нами транспортных компаний, все веса будут округлены до следующего полного фунта.

журналов открытого доступа | OMICS International

Защита искробезопасными барьерами из R.STAHL

Наши продукты и их преимущества

Только R. STAHL позволяет устанавливать все устройства ISpac индивидуально, в группах или в пакете-носителе. Наш обширный ассортимент модулей уже охватывает множество приложений и различных применений, включая функциональную безопасность (SIL). Оценка согласно SIL2 и SIL3 также распространяется на устройства с функцией аварийного усилителя. Благодаря комбинации изоляторов, мультиплексоров HART и оконечных плат сигналы HART эффективно передаются в системы управления активами.

Изоляторы

выделяются универсальными вариантами применения и высокой совместимостью с системами автоматизации от известных производителей. Для преобразователей, датчиков приближения, индикаторных ламп или звуковых сигналов — у нас есть подходящее решение для любого применения. В нашем ассортименте всех типов сигналов , от простых переключающих повторителей и блоков питания для преобразователей HART до высокофункциональных преобразователей температуры с функциями отключающего усилителя.Таким образом, набор функций покрывает требования технологических систем и приложений машиностроения.

Новые модули имеют ширину всего 12,5 мм и позволяют использовать как 1-, так и 2-канальные соединения. Это экономит до 30% больше места, тем самым увеличивая доступное пространство внутри шкафа. Они особенно энергоэффективны и подходят для использования в широком диапазоне температур. Наши изоляторы обеспечивают безопасную работу полевых устройств во всех секторах. Они надежно выполняют свои задачи даже в непосредственной близости от машин, на кораблях или в любой среде с высокой вибрацией.Более того, разделительные барьеры R. STAHL можно использовать во всем мире. Изолирующая система ISpac получила одобрение в соответствии с IECEx, ATEX, FM, UL, EAC TR и рядом дополнительных международных стандартов.

Все вместе будет работать? — Здесь вы можете выбрать любые совместимые полевые устройства от отдельных производителей или определенных типов. Проверьте, совместимы ли ваши полевые устройства с изоляторами ISpac, или получите обзор функций и основных характеристик линейки изоляторов ISpac:

CMSY10

% PDF-1.6
%
1 0 объект
>
эндобдж
4 0 obj
>
эндобдж
2 0 obj
>
ручей
2012-05-10T16: 05: 18 + 02: 002012-05-10T16: 05: 07 + 02: 002012-05-10T16: 05: 18 + 02: 00David M. Jonesapplication / pdf

uuid: fbc02fbc-ee3f-4981-890f-1446726fc481uuid: 31cdc08b-8098-43e9-9933-a6cc0e9a7399GPL Ghostscript 9.04

конечный поток
эндобдж
3 0 obj
>
эндобдж
5 0 obj
>
эндобдж
6 0 obj
>
эндобдж
7 0 объект
>
эндобдж
8 0 объект
>
эндобдж
9 0 объект
>
/ XObject>
>>
/ Аннотации [37 0 R]
/ Родитель 5 0 R
/ MediaBox [0 0 595 842]
>>
эндобдж
10 0 obj
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
11 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
12 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
13 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
14 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
15 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
16 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
17 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
18 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
19 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
20 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
21 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
22 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
23 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
24 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
25 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
26 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
27 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
28 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
29 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
30 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
31 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
32 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
33 0 объект
>
/ Повернуть 0
/ Тип / Страница
>>
эндобдж
34 0 объект
>
ручей
xWMo6% s ڛ t ڑ (Y
AlɶEҿ7CRCWLHΛ7GKns9_NM / _] ׉ l Gc [-?,! AC͂3 ޽ y9uwaY? U? HN8DGd + ޟ ax @ * ~ G½e! | # [8XNN (% ju 㯹

Возможная роль аполипопротеина A1 в заживлении и гибели нейронов после гибели нейронов травма

1.М. Э. Шваб и Д. Бартольди: дегенерация и регенерация аксонов в пораженном спинном мозге. Physiol Rev , 76 (2), 319-370 (1996)

2. M. G. Fehlings и D. H. Nguyen: Иммуноглобулин G: потенциальное средство для ослабления нейровоспаления после повреждения спинного мозга. J Clin Immunol , 30 Suppl 1, S109-112 (2010)

3. А. И. Фаден и Р. П. Саймон: потенциальная роль эксайтотоксинов в патофизиологии повреждения спинного мозга. Энн Нейрол , 23 (6), 623-626 (1988)

4.Д. Дж. Макаду, Г. Ю. Сюй, Г. Робак и М. Г. Хьюз: изменения концентрации аминокислот во времени и пространстве вокруг ударной травмы и их распространение через спинной мозг крысы. Exp Neurol , 159 (2), 538-544 (1999)

5. PK Stys, SG Waxman и BR Ransom: Ионные механизмы аноксического повреждения белого вещества ЦНС млекопитающих: роль Na + -каналов и Na (+) — Обменник Ca2 +. J Neurosci , 12 (2), 430-439 (1992)

6. Y. Xiong, Q. Gu, P. L. Peterson, J.П. Муйзелаар и К. П. Ли: Дисфункция митохондрий и нарушение кальция, вызванное черепно-мозговой травмой. J Neurotrauma , 14 (1), 23-34 (1997)

7. Y. Xiong, PL Peterson, BH Verweij, FC Vinas, JP Muizelaar и CP Lee: Дисфункция митохондрий после экспериментальной черепно-мозговой травмы: комбинированная эффективность SNX-111 и U-101033E. J Neurotrauma , 15 (7), 531-544 (1998)

8. Э. Д. Холл и Дж. Э. Спрингер: Нейропротекция и острое повреждение спинного мозга: переоценка. NeuroRx , 1 (1), 80-100 (2004)

9. Y. Xiong, A. G. Rabchevsky и E. D. Hall: Роль пероксинитрита во вторичном окислительном повреждении после травмы спинного мозга. J Neurochem , 100 (3), 639-649 (2007)

10. Дж. Д. Гест, Э. Д. Хистер и Р. П. Бунге: Демиелинизация и реакции шванновских клеток, прилегающих к полостям эпицентра повреждения после хронического повреждения спинного мозга человека. Exp Neurol , 192 (2), 384-393 (2005)

11. Р. Дж. Дюмон, Д. О. Оконкво, С.Верма, Р. Дж. Херлберт, П. Т. Булос, Д. Б. Эллегала и А. С. Дюмон: Острое повреждение спинного мозга, часть I: патофизиологические механизмы. Clin Neuropharmacol , 24 (5), 254-264 (2001)

12. Эмери Эмери, П. Алдана, М.Б. Бунге, У. Пакетт, А. Сринивасан, Р. У. Кин, Дж. Бетеа и А. Д. Леви: Апоптоз после травмы спинного мозга человека. J Neurosurg , 89 (6), 911-920 (1998)

13. I. Koyanagi, CH Tator и PJ Lea: Трехмерный анализ сосудистой системы в спинном мозге крысы с помощью сканирующей электронной микроскопии коррозии сосудов. слепки.Часть 1: Нормальный спинной мозг. Neurosurgery , 33 (2), 277-283; обсуждение 283-274 (1993) 277-283; обсуждение 283-274 (1993)

14. Д. Блонд, С. Дж. Кэмпбелл, А. Г. Бутчарт, В. Х. Перри и Д. К. Энтони: Дифференциальная индукция интерлейкина-1бета и фактора некроза опухоли альфа может объяснять специфические модели рекрутирования лейкоцитов в головном мозге. . Brain Res , 958 (1), 89-99 (2002)

15. Л. Фан, П. Р. Янг, Ф. К. Барон, Г. З. Фейерштейн, Д. Х. Смит и Т.К. Макинтош: Экспериментальное повреждение головного мозга индуцирует экспрессию мРНК интерлейкина-1 бета в головном мозге крысы. Brain Res Mol Brain Res , 30 (1), 125-130 (1995)

16. Т. Лю, Р. К. Кларк, П. К. Макдоннелл, П. Р. Янг, Р. Ф. Уайт, Ф. К. Бароне и Г. З. Фейерштейн: Фактор некроза опухоли альфа экспрессия в ишемических нейронах. Stroke , 25 (7), 1481-1488 (1994)

17. YS Gwak, J. Kang, GC Unabia и CE Hulsebosch: Пространственная и временная активация глиальных клеток спинного мозга: роль глиопатии в центральной нейропатической боли, следующей за позвоночником. травма пуповины у крыс. Exp Neurol , 234 (2), 362-372 (2012)

18. Дж. К. Олсон: Иммунный ответ микроглии в спинном мозге. Ann NY Acad Sci , 1198, 271-278 (2010)

19. Л. Шнелл, С. Фирн, Х. Классен, М. Е. Шваб и В. Х. Перри: Острые воспалительные реакции на механические поражения в ЦНС: различия между мозгом и спинной мозг. Eur J Neurosci , 11 (10), 3648-3658 (1999)

20. Л. Шнелл, С. Фирн, М. Э. Шваб, В. Х. Перри и Д. С. Энтони: вызванное цитокинами острое воспаление в головном и спинном мозге. J Neuropathol Exp Neurol , 58 (3), 245-254 (1999)

21. A. di Penta, B. Moreno, S. Reix, B. Fernandez-Diez, M. Villanueva, O. Errea, N. Escala, K. Vandenbroeck, JX Comella и P. Villoslada: Окислительный стресс и провоспалительные цитокины способствуют демиелинизации и повреждению аксонов в модели нейровоспаления в культуре мозжечка. PLoS One , 8 (2), e54722 (2013)

22. I. Dusart и M. E. Schwab: Вторичная гибель клеток и воспалительная реакция после дорсальной гемисекции спинного мозга крысы. Eur J Neurosci , 6 (5), 712-724 (1994)

23. C. A. Oyinbo: Механизмы вторичного повреждения при травматическом повреждении спинного мозга: частичка этого множественного каскада. Acta Neurobiologiae Experimentalis , 71 (2), 281-299 (2011)

24. M. E. Schwab и L. Schnell: Регионоспецифическое появление миелиновых составляющих в развивающемся спинном мозге крысы. J Neurocytol , 18 (2), 161-169 (1989)

25. L. Schnell и M. E. Schwab: Регенерация аксонов в спинном мозге крысы, продуцируемая антителом против миелин-ассоциированных ингибиторов роста нейритов. Nature , 343 (6255), 269-272 (1990)

26. MS Chen, AB Huber, ME van der Haar, M. Frank, L. Schnell, AA Spillmann, F. Christ and ME Schwab: Nogo- А представляет собой миелин-ассоциированный ингибитор разрастания нейритов и антиген моноклонального антитела IN-1. Nature , 403 (6768), 434-439 (2000)

27. А. Э. Фурнье, Т. ГрандПре и С. М. Стритматтер: Идентификация рецептора, опосредующего ингибирование регенерации аксонов Nogo-66. Природа , 409 (6818), 341-346 (2001)

28.В. А. Бартон, Б. П. Лю, Д. Цветкова, П. Д. Джеффри, А. Е. Фурнье, Д. Сах, Р. Кейт, С. М. Стритматтер и Д. Б. Николов: структура и связывание ингибитора отрастания аксонов рецептора Nogo-66 и родственных белков. EMBO J , 22 (13), 3291-3302 (2003)

29. WB Cafferty, P. Duffy, E. Huebner и SM Strittmatter: MAG и OMgp взаимодействуют с Nogo-A для ограничения роста аксонов и неврологического восстановления после травма спинного мозга. Дж. Neurosci , 30 (20), 6825-6837 (2010)

30.М. Ли, А. Шибата, К. Ли, П. Е. Браун, Л. МакКеррахер, Дж. Родер, С. Б. Катер и С. Дэвид: Гликопротеин, связанный с миелином, подавляет рост нейритов / аксонов и вызывает коллапс конуса роста. J Neurosci Res , 46 (4), 404-414 (1996)

31. M. E. De Bellard и M. T. Filbin: Миелин-ассоциированный гликопротеин, MAG, избирательно связывает несколько нейронных белков. J Neurosci Res , 56 (2), 213-218 (1999)

32. Д. Хант, Р. С. Коффин и П. Н. Андерсон: рецептор Nogo, его лиганды и регенерация аксонов в спинном мозге; Обзор. J Neurocytol , 31 (2), 93-120 (2002)

33. Т. Кубо, К. Хата, А. Ямагути и Т. Ямасита: Ингибиторы Rho-ROCK как новые стратегии для стимуляции регенерации нервов. Curr Pharm Des , 13 (24), 2493-2499 (2007)

34. К. Т. Болдуин и Р. Дж. Гигер: понимание физиологической роли ингибиторов регенерации ЦНС. Front Mol Neurosci , 8, 23 (2015)

35. J. K. Lee, C. G. Geoffroy, A. F. Chan, K. E. Tolentino, M. J. Crawford, M. A.Leal, B. Kang и B. Zheng: Оценка регенерации спинномозговых аксонов и прорастания у мышей с дефицитом Nogo, MAG и OMgp. Neuron , 66 (5), 663-670 (2010)

36. A. E. Fournier, B. T. Takizawa и S. M. Strittmatter: Ингибирование киназы Rho усиливает регенерацию аксонов в поврежденной ЦНС. J Neurosci , 23 (4), 1416-1423 (2003)

37. RJ Gilbert, RJ McKeon, A. Darr, A. Calabro, VC Hascall и RV Bellamkonda: CS-4,6 дифференцированно активируется в глиальных клетках. рубец и является мощным ингибитором роста нейритов. Mol Cell Neurosci , 29 (4), 545-558 (2005)

38. H. Wang, Y. Katagiri, TE McCann, E. Unsworth, P. Goldsmith, ZX Yu, F. Tan, L. Santiago , EM Mills, Y. Wang, AJ Symes и HM Geller: Хондроитин-4-сульфатирование отрицательно регулирует ведение и рост аксонов. J Cell Sci , 121 (Pt 18), 3083-3091 (2008)

39. С. Карими-Абдолрезаи и Р. Биллаканти: Реактивный астроглиоз после положительных и отрицательных эффектов повреждения спинного мозга. Мол нейробиол , 46 (2), 251-264 (2012)

40.Р. Дж. МакКеон, Р. С. Шрайбер, Дж. С. Радж и Дж. Сильвер: Уменьшение разрастания нейритов в модели глиального рубцевания после повреждения ЦНС коррелирует с экспрессией ингибирующих молекул на реактивных астроцитах. J Neurosci , 11 (11), 3398-3411 (1991)

41. FM Maynard, Jr., MB Bracken, G. Creasey, JF Ditunno, Jr., WH Донован, TB Ducker, SL Garber, RJ Marino , SL Stover, CH Tator, RL Waters, JE Wilberger и W. Young: Международные стандарты неврологической и функциональной классификации травм спинного мозга.Американская ассоциация травм позвоночника. Spinal Cord , 35 (5), 266-274 (1997)

42. A. Jaleel, GC Henderson, BJ Madden, KA Klaus, DM Morse, S. Gopala и KS Nair: Идентификация синтезированных de novo и относительно более старые белки: ускоренное окислительное повреждение de novo синтезированного аполипопротеина A-1 при диабете 1 типа. Диабет , 59 (10), 2366-2374 (2010)

43. M. B. Sengupta, M. Basu, S. Iswarari, K. K. Mukhopadhyay, K.П. Сардар, Б. Ачарья, П. К. Моханти и Д. Мухопадхьяй: Протеомика спинномозговой жидкости вторичной фазы повреждения спинного мозга у людей: нарушенные молекулярные пути после травмы. PLoS One , 9 (10) (2014)

44. Р. А. Хегеле: Липопротеины плазмы: генетическое влияние и клиническое значение. Nat Rev Genet , 10 (2), 109-121 (2009)

45. MJ Ladu, C. Reardon, L. Van Eldik, AM Fagan, G. Bu, D. Holtzman и GS Getz: Липопротеины в Центральная нервная система. Ann N Y Acad Sci , 903, 167-175 (2000)

46. A. J. Lusis: Atherosclerosis. Nature , 407 (6801), 233-241 (2000)

47. А. Андреола, В. Беллотти, С. Джорджетти, П. Манджоне, Л. Обичи, М. Стоппини, Дж. Торрес, Э. Монзани , G. Merlini и M. Sunde: переключение конформации и фибриллогенез в амилоидогенном фрагменте аполипопротеина aI. J Biol Chem , 278 (4), 2444-2451 (2003)

48. C. Yu, K. L. Youmans и M. J. LaDu: Предлагаемый механизм ремоделирования липопротеинов в головном мозге. Biochim Biophys Acta , 1801 (8), 819-823 (2010)

49. О. Гурски: Структурная стабильность и функциональное ремоделирование липопротеинов высокой плотности. FEBS Lett (2015)

50. M. C. Phillips: Новые взгляды на определение структуры ЛПВП аполипопротеинами: серия тематических обзоров: структура, функция и метаболизм липопротеинов высокой плотности. J Lipid Res , 54 (8), 2034-2048 (2013)

51. М. Л. Варбан, Ф. Риннингер, Н. Ван, В. Фэйрчайлд-Хантресс, Дж.Х. Данмор, К. Фанг, М. Л. Госселин, К. Л. Диксон, Дж. Д. Дидс, С. Л. Эктон, А. Р. Талл и Д. Хусар: Целенаправленная мутация показывает центральную роль SR-BI в избирательном поглощении холестерина липопротеинов высокой плотности печенью. Proc Natl Acad Sci U S. A , 95 (8), 4619-4624 (1998)

52. A. N. Hoofnagle и J. W. Heinecke: Липопротеомика: использование протеомики на основе масс-спектрометрии для изучения сборки, структуры и функции липопротеинов. J Lipid Res , 50 (10), 1967-1975 (2009)

53.И. Бьоркхем и С. Мини: Холестерин в мозге: долгая тайная жизнь за преградой. Arterioscler Thromb Vasc Biol , 24 (5), 806-815 (2004)

54. Дж. Дж. Снайпс и У. Сутер: Холестерин и миелин. Subcell Biochem , 28, 173-204 (1997)

55. A. Chakrabarti, A. Chatterjee, MB Sengupta, P. Chattopadhyay и D. Mukhopadhyay: измененные уровни белков-предшественников амилоида, взаимодействующих с внутриклеточным доменом, при болезни Альцгеймера . Болезнь Альцгеймера и связанные с ней расстройства , 28 (3), 283-290 (2014)

56.I. Borghini, F. Barja, D. Pometta и R. W. James: характеристика субпопуляций липопротеиновых частиц, выделенных из спинномозговой жидкости человека. Biochim Biophys Acta , 1255 (2), 192-200 (1995)

57. MJ LaDu, SM Gilligan, JR Lukens, VG Cabana, CA Reardon, LJ Van Eldik и DM Holtzman: возникающие частицы астроцитов отличаются от липопротеинов по CSF. J Neurochem , 70 (5), 2070-2081 (1998)

58. С. Д. Харр, Л. Уинт, Р. Холлистер, Б.Т. Хайман и А. Дж. Мендес: Экспрессия в мозге аполипопротеинов E, J и A-I при болезни Альцгеймера. J Neurochem , 66 (6), 2429-2435 (1996)

59. D. A. Elliott, C. S. Weickert и B. Garner: Аполипопротеины в головном мозге: значение для неврологических и психических расстройств. Clin Lipidol , 51 (4), 555-573 (2010)

60. A. Rigotti, B. Trigatti, J. Babitt, M. Penman, S. Xu и M. Krieger: Рецептор мусорщика BI — a Рецептор клеточной поверхности для липопротеинов высокой плотности. Curr Opin Lipidol , 8 (3), 181-188 (1997)

61. E. Favari, A. Chroni, UJ Tietge, I. Zanotti, JC Escola-Gil и F. Bernini: отток холестерина и обратный холестерин транспорт. Handb Exp Pharmacol , 224, 181-206 (2015)

62. G. J. Zhao, K. Yin, Y. C. Fu и C.K. Tang: Взаимодействие ApoA-I и ABCA1 запускает пути передачи сигнала, которые опосредуют отток клеточных липидов. Mol Med , 18, 149-158 (2012)

63. Дж. Р. Нофер: Передача сигнала ЛПВП: агонисты, рецепторы и сигнальные каскады. Handb Exp Pharmacol , 224, 229-256 (2015)

64. BJ Van Lenten, SY Hama, FC de Beer, DM Stafforini, TM McIntyre, SM Prescott, BN La Du, AM Fogelman and M. Navab: Anti — воспалительные ЛПВП становятся провоспалительными во время острой фазы ответа. Потеря защитного действия ЛПВП против окисления ЛПНП в сокультурах клеток стенки аорты. J Clin Invest , 96 (6), 2758-2767 (1995)

65. А. Дж. Мерфи, К. Дж. Вуллард, А. Хоанг, Н. Мухамедова, Р.А. Стирзакер, С. П. Маккормик, А. Т. Ремалей, Д. Свиридов и Дж. Чин-Дустинг: Липопротеины высокой плотности снижают воспалительную реакцию моноцитов человека. Arterioscler Thromb Vasc Biol , 28 (11), 2071-2077 (2008)

66. JR Nofer, AT Remaley, R. Feuerborn, I. Wolinnska, T. Engel, A. von Eckardstein и G. Assmann: Apolipoprotein AI активирует передачу сигналов Cdc42 через транспортер ABCA1. J Lipid Res , 47 (4), 794-803 (2006)

67. L. K. Curtiss, D.Т. Валента, Н. Дж. Хайм и К. А. Рай: В чем особенность аполипопротеина AI в обратном транспорте холестерина? Arterioscler Thromb Vasc Biol , 26 (1), 12-19 (2006)

68. PS Chetty, L. Mayne, S. Lund-Katz, D. Stranz, SW Englander и MC Phillips: Спиральная структура и стабильность в человеческий аполипопротеин AI методами водородного обмена и масс-спектрометрии. Proc Natl Acad Sci U S A , 106 (45), 19005-19010 (2009)

69. М. Н. Ода, Т. М. Форте, Р. О.Райан и Дж. К. Восс: С-концевой домен аполипопротеина A-I содержит липид-чувствительный конформационный триггер. Nat Struct Biol , 10 (6), 455-460 (2003)

70. IN Gorshkova, T. Liu, HY Kan, A. Chroni, VI Zannis и D. Atkinson: Структура и стабильность аполипопротеина aI в растворе и в дискоидальном липопротеине высокой плотности, обнаруженном с помощью удаления двойного заряда и делеционной мутации. Биохимия , 45 (4), 1242-1254 (2006)

71. О. Гурски и Д.Аткинсон: Термическое разворачивание человеческого аполипопротеина A-1 высокой плотности: последствия для расплавленного глобулярного состояния без липидов. Proc Natl Acad Sci USA , 93 (7), 2991-2995 (1996)

72. M. Tanaka, P. Dhanasekaran, D. Nguyen, M. Nickel, Y. Takechi, S. Lund-Katz, MC Филлипс и Х. Сайто: Влияние стабильности пучка N-концевой спирали на липид-связывающие свойства человеческого аполипопротеина AI. Biochim Biophys Acta , 1811 (1), 25-30 (2011)

73. Дж. Б. Мэсси и Х.J. Pownall: Холестерин является определяющим фактором структур дискоидных липопротеинов высокой плотности, образованных в результате солюбилизации фосфолипидных мембран аполипопротеином A-I. Biochim Biophys Acta , 1781 (5), 245-253 (2008)

74. В. И. Заннис, П. Фотакис, Г. Кукос, Д. Кардассис, К. Энхольм, М. Яухиайнен и А. Хрони: биогенез ЛПВП , ремоделирование и катаболизм. Handb Exp Pharmacol , 224, 53-111 (2015)

75. A. Jonas: Лецитин-холестерин-ацилтрансфераза. Biochim Biophys Acta , 1529 (1-3), 245-256 (2000)

76. PJ Barter, HB Brewer, Jr., MJ Chapman, CH Hennekens, DJ Rader и AR Tall: белок-переносчик эфира холестерина: a новая мишень для повышения HDL и ингибирования атеросклероза. Arterioscler Thromb Vasc Biol , 23 (2), 160-167 (2003)

77. S. Lusa, M. Jauhiainen, J. Metso, P. Somerharju и C. Ehnholm: Механизм белка-переноса фосфолипидов в плазме человека. -индуцированное увеличение частиц липопротеинов высокой плотности: свидетельство слияния частиц. Biochem J , 313 (Pt 1), 275-282 (1996)

78. C. Rohrl и H. Stangl: эндоцитоз и резекция ЛПВП. Biochim Biophys Acta , 1831 (11), 1626-1633 (2013)

79. Дж. М. Дитши: Центральная нервная система: обмен холестерина, развитие мозга и нейродегенерация. Biol Chem , 390 (4), 287-293 (2009)

80. С. Витали, К. Л. Веллингтон и Л. Калабрези: управление ЛПВП и холестерином в головном мозге. Cardiovasc Res , 103 (3), 405-413 (2014)

81.Дж. М. Дитши и С. Д. Терли: Серия тематических обзоров: Липиды мозга. Метаболизм холестерина в центральной нервной системе в раннем развитии и у зрелых животных. J Lipid Res , 45 (8), 1375-1397 (2004)

82. S. Koch, N. Donarski, K. Goetze, M. Kreckel, HJ Stuerenburg, C. Buhmann и U. Beisiegel: Характеристика четыре класса липопротеинов в спинномозговой жидкости человека. J Lipid Res , 42 (7), 1143-1151 (2001)

83. Z. Balazs, U. Panzenboeck, A.Хаммер, А. Сович, О. Квехенбергер, Э. Малле и В. Саттлер: Поглощение и транспорт липопротеинов высокой плотности (ЛВП) и альфа-токоферола, ассоциированного с ЛПВП, с помощью модели гематоэнцефалического барьера in vitro . J Neurochem , 89 (4), 939-950 (2004)

84. W. S. Kim, C. S. Weickert и B. Garner: роль переносчиков АТФ-связывающих кассет в транспорте липидов мозга и неврологических заболеваниях. J Neurochem , 104 (5), 1145-1166 (2008)

85. Р. П. Колдамова, И. М. Лефтеров, М.Д. Икономович, Дж. Скоко, П. И. Лефтеров, Б. А. Исанский, С. Т. ДеКоски и Дж. С. Лазо: 22R-гидроксихолестерин и 9-цис-ретиноевая кислота индуцируют экспрессию АТФ-связывающего кассетного транспортера A1 и отток холестерина в клетки мозга и снижают секрецию бета-амилоида. J Biol Chem , 278 (15), 13244-13256 (2003)

86. D. M. Holtzman, J. Herz и G. Bu: Аполипопротеин E и рецепторы аполипопротеина E: нормальная биология и роль в болезни Альцгеймера. Cold Spring Harb Perspect Med , 2 (3), a006312 (2012)

87.В. И. Заннис, А. Хрони и М. Кригер: роль апоА-I, ABCA1, LCAT и SR-BI в биогенезе ЛПВП. J Mol Med (Berl) , 84 (4), 276-294 (2006)

88. V. Hirsch-Reinshagen, J. Donkin, S. Stukas, J. Chan, A. Wilkinson, J. Fan, JS Parks, JA Kuivenhoven, D. Lutjohann, H. Pritchard и CL Wellington: LCAT, синтезируемый первичными астроцитами, этерифицирует холестерин на липопротеинах, полученных из глии. J Lipid Res , 50 (5), 885-893 (2009)

89. J. J. Albers, J.Х. Толлефсон, Г. Вольфбауэр и Р. Э. Олбрайт-младший: белок-переносчик эфира холестерина в мозге человека. Int J Clin Lab Res , 21 (3), 264-266 (1992)

90. AP Chirackal Manavalan, A. Kober, J. Metso, I. Lang, T. Becker, K. Hasslitzer, M. Zandl , E. Fanaee-Danesh, JB Pippal, V. Sachdev, D. Kratky, J. Stefulj, M. Jauhiainen и U. Panzenboeck: белок-переносчик фосфолипидов экспрессируется в эндотелиальных клетках сосудов головного мозга и участвует в биогенезе липопротеинов высокой плотности и ремоделировании гематоэнцефалический барьер. J Biol Chem , 289 (8), 4683-4698 (2014)

91. С. Россиньоль, М. Шваб, М. Шварц и М. Г. Фелингс: Травма спинного мозга: время действовать? J Neurosci , 27 (44), 11782-11792 (2007)

92. J. W. Heinecke: Протеом ЛПВП: маркер — и, возможно, медиатор — ишемической болезни сердца. J Lipid Res , 50 Suppl, S167-171 (2009)

93. С. Грюнфельд, М. Маршалл, Дж. К. Шигенага, А. Х. Мозер, П. Тобиас и К. Р. Фейнголд: Липопротеины ингибируют активацию макрофагов липотейхоевой кислотой. J Lipid Res , 40 (2), 245-252 (1999)

94. М. Вендель, Р. Пол и А. Р. Хеллер: Липопротеины при воспалении и сепсисе. II. Клинические аспекты. Intensive Care Med , 33 (1), 25-35 (2007)

95. AJ Wilhelm, M. Zabalawi, JS Owen, D. Shah, JM Grayson, AS Major, S. Bhat, DP Gibbs, Jr. , MJ Thomas и MG Sorci-Thomas: Аполипопротеин AI модулирует регуляторные Т-клетки у аутоиммунных мышей LDLr — / -, ApoA-I — / -. Дж. Биол. Хим. , 285 (46), 36158-36169 (2010)

96.H. Feng, L. Guo, D. Wang, H. Gao, G. Hou, Z. Zheng, J. Ai, O. Foreman, A. Daugherty и XA Li: Дефицит рецептора поглотителя BI приводит к нарушению гомеостаза лимфоцитов и аутоиммунные нарушения у мышей. Arterioscler Thromb Vasc Biol , 31 (11), 2543-2551 (2011)

97. AJ Murphy, M. Westerterp, L. Yvan-Charvet и AR Tall: Антиатерогенные механизмы липопротеинов высокой плотности: влияние на миелоид клетки. Biochim Biophys Acta , 1821 (3), 513-521 (2012)

98.Д. Де Нардо, Л. И. Лабзин, Х. Коно, Р. Секи, С. В. Шмидт, М. Бейер, Д. Сю, С. Циммер, К. Ларманн, Ф. А. Шильдберг, Й. Фогельхубер, М. Краут, Т. Улас, A. Kerksiek, W. Krebs, N. Bode, A. Grebe, ML Fitzgerald, NJ Hernandez, BR Williams, P. Knolle, M. Kneilling, M. Rocken, D. Lutjohann, SD Wright, JL Schultze и E. Latz : Липопротеины высокой плотности опосредуют противовоспалительное репрограммирование макрофагов через регулятор транскрипции ATF3. Нат Иммунол , 15 (2), 152-160 (2014)

99.KD Kim, HY Lim, HG Lee, DY Yoon, YK Choe, I. Choi, SG Paik, YS Kim, Y. Yang и JS Lim: Аполипопротеин AI индуцирует продукцию IL-10 и PGE2 в моноцитах человека и ингибирует дифференцировку дендритных клеток и созревание. Biochem Biophys Res Commun , 338 (2), 1126-1136 (2005)

100. К. Саймонс и Э. Иконен: Функциональные рафты в клеточных мембранах. Nature , 387 (6633), 569-572 (1997)

101. Р. Зидовецкий и И. Левитан: Использование циклодекстринов для управления содержанием холестерина в плазматической мембране: доказательства, заблуждения и стратегии контроля. Biochim Biophys Acta , 1768 (6), 1311-1324 (2007)

102. P. S. Kabouridis и E. C. Jury: Липидные рафты и функция Т-лимфоцитов: последствия для аутоиммунитета. FEBS Lett , 582 (27), 3711-3718 (2008)

103. Х. А. Андерсон, Э. М. Хилтболд и П. А. Рош: Концентрация молекул MHC класса II в липидных рафтах способствует презентации антигена. Nat Immunol , 1 (2), 156-162 (2000)

104. Л. Э. Смитис, К. Р. Уайт, А. Махешвари, М.Н. Палгуначари, Г. М. Анантарамайя, М. Чадда, А. Р. Курундкар и Г. Датта: миметик 4F аполипопротеина A-I изменяет функцию макрофагов, полученных из моноцитов человека. Am J Physiol Cell Physiol , 298 (6), C1538-1548 (2010)

105. X. Zhu, JY Lee, JM Timmins, JM Brown, E. Boudyguina, A. Mulya, AK Gebre, MC Willingham, EM Hiltbold, N. Mishra, N. Maeda и JS Parks: Повышенный уровень свободного холестерина в клетках у мышей с нокаутом по макрофагам Abca1 усиливает провоспалительную реакцию макрофагов. J Biol Chem , 283 (34), 22930-22941 (2008)

106. SH Wang, SG Yuan, DQ Peng и SP Zhao: HDL и ApoA-I ингибируют активацию Т-клеток, опосредованную презентацией антигена, разрушая липидные рафты. в антигенпредставляющих клетках. Атеросклероз , 225 (1), 105-114 (2012)

107. AJ Murphy, KJ Woollard, A. Suhartoyo, RA Stirzaker, J. Shaw, D. Sviridov and JP Chin-Dusting: активация нейтрофилов ослабляется липопротеин высокой плотности и аполипопротеин AI в in vitro, и in vivo моделях воспаления. Arterioscler Thromb Vasc Biol , 31 (6), 1333-1341 (2011)

108. HJ van Leeuwen, EC Heezius, GM Dallinga, JA van Strijp, J. Verhoef и KP van Kessel: метаболизм липопротеинов у пациентов с тяжелыми формами сепсис. Crit Care Med , 31 (5), 1359-1366 (2003)

109. JY Chien, JS Jerng, CJ Yu и PC Yang: Низкий уровень холестерина липопротеидов высокой плотности в сыворотке крови является плохим прогностическим фактором для тяжелого сепсиса. . Crit Care Med , 33 (8), 1688-1693 (2005)

110.В. Г. Кабана, Дж. Н. Сигель и С. М. Сабесин: Влияние реакции острой фазы на концентрацию и распределение плотности липидов и аполипопротеинов в плазме. J Lipid Res , 30 (1), 39-49 (1989)

111. M. Menschikowski, A. Hagelgans и G. Siegert: Секреторная фосфолипаза A2 группы IIA: атакующий или защитный игрок во время атеросклероза и другие воспалительные заболевания? Простагландины Другая липидная среда , 79 (1-2), 1-33 (2006)

112.К. О. Баделлино, М. Л. Вулф, М. П. Рейли и Д. Дж. Рейдер: Эндотелиальная липаза увеличивается на in vivo на из-за воспаления у людей. Circulation , 117 (5), 678-685 (2008)

113. M. de la Llera Moya, FC McGillicuddy, CC Hinkle, M. Byrne, MR Joshi, V. Nguyen, J. Tabita-Martinez, ML Вулф, К. Баделлино, Л. Прускино, Н. Н. Мета, Б. Ф. Асталос и М. П. Рейли: Воспаление модулирует состав и функцию ЛПВП человека in vivo . Атеросклероз , 222 (2), 390-394 (2012)

114.JH Graversen, G. Castro, A. Kandoussi, H. Nielsen, EI Christensen, A. Norden и SK Moestrup: Ключевая роль почки человека в катаболизме компонентов белка HDL, аполипопротеина AI и A-IV, но не A-II . Липиды , 43 (5), 467-470 (2008)

115. А. Джахангири, М. С. де Бир, В. Ноффсингер, Л. Р. Таннок, К. Рамайя, Н. Р. Уэбб, Д. Р. ван дер Вестхейзен и Ф. К. де Бир: Ремоделирование ЛПВП во время острой фазы ответа. Артериосклерный тромб Vasc Biol , 29 (2), 261-267 (2009)

116.G. Cavigiolio и S. Jayaraman: Протеолиз аполипопротеина A-I секреторной фосфолипазой A (2): новая связь между воспалением и атеросклерозом. J Biol Chem , 289 (14), 10011-10023 (2014)

117. N. Hyka, JM Dayer, C. Modoux, T. Kohno, CK Edwards, 3rd, P. Roux-Lombard and D. Burger : Аполипопротеин AI подавляет выработку интерлейкина-1бета и фактора некроза опухоли альфа, блокируя контактно-опосредованную активацию моноцитов Т-лимфоцитами. Кровь , 97 (8), 2381-2389 (2001)

118.М.А. Наварро, Р. Карпинтеро, С. Ацин, Дж. М. Арбонес-Майнар, Л. Каллея, Р. Карнисер, Дж. К. Сурра, М. А. Гусман-Гарсия, Н. Гонсалес-Рамон, М. Итурральде, Ф. Лампрев, А. Пинейро и J. Osada: Иммунорегуляция кластера генов аполипопротеина AI / C-III / A-IV при экспериментальном воспалении. Cytokine , 31 (1), 52-63 (2005)

119. Д.А. Могиленко, Е.Б. Диже, В.С. Шавва, И.А. Лапиков, С.В. Орлов, А.П. Перевозчиков: роль ядерных рецепторов HNF4 alpha, PPAR alpha и LXRs в опосредованном TNF альфа ингибировании экспрессии гена аполипопротеина AI человека в клетках HepG2. Biochemistry , 48 (50), 11950-11960 (2009)

120. Р.А. Танхоффер, Р.К. Ямазаки, Е.А. Нунес, А.И. Пчевозники, А.М. Пчевозники, К. Ногата, Дж. Айкава, С.Дж. Бонатто, Дж. Брито, доктор медицинских наук. Лисса и LC Fernandes: Концентрация глутамина и иммунный ответ крыс с повреждением спинного мозга. J Spinal Cord Med , 30 (2), 140-146 (2007) травмированные крысы. J Spinal Cord Med , 30 (2), 140-146 (2007)

121. Н. П. Туррин и С. Ривест: Молекулярные и клеточные иммунные медиаторы нейрозащиты. Mol Neurobiol , 34 (3), 221-242 (2006)

122. С. Хендрикс и Р. Нитч: Роль Т-хелперных клеток в нейропротекции и регенерации. J Neuroimmunol , 184 (1-2), 100-112 (2007)

123. W. Luu, L. J. Sharpe, I. C. Gelissen и A. J. Brown: роль передачи сигналов в гомеостазе клеточного холестерина. IUBMB Life , 65 (8), 675-684 (2013)

124. Д. Кардассис, А. Гафенку, В. И. Заннис и А. Давалос: Регуляция генов ЛПВП: транскрипционная, посттранскрипционная и посттрансляционная. Handb Exp Pharmacol , 224, 113-179 (2015)

125. YW Hu, X. Ma, XX Li, XH Liu, J. Xiao, ZC Mo, J. Xiang, DF Liao и CK Tang: Эйкозапентаеновая кислота снижает фосфорилирование серина ABCA1 и нарушает ABCA1-зависимый отток холестерина через сигнальный путь циклического AMP / протеинкиназы A в пенистых клетках, полученных из макрофагов THP-1. Атеросклероз , 204 (2), e35-43 (2009)

126. Б. Хайдар, М. Денис, М. Марсил, Л. Кримбоу и Дж. Дженест младший: Аполипопротеин AI активирует передачу сигналов клеточного цАМФ через ABCA1 транспортер. J Biol Chem , 279 (11), 9963-9969 (2004)

127. RH See, RA Caday-Malcolm, RR Singaraja, S. Zhou, A. Silverston, MT Huber, J. Moran, ER James, R. Janoo, JM Savill, V. Rigot, LH Zhang, M. Wang, G. Chimini, CL Wellington, SR Tafuri и MR Hayden: сайт-специфическое фосфорилирование протеинкиназы A регулирует фосфолипид, опосредованный АТФ-связывающей кассетой A1 (ABCA1). отток. J Biol Chem , 277 (44), 41835-41842 (2002)

128. Y. Yamauchi, C.С. Чанг, М. Хаяси, С. Абэ-Дохма, П. С. Рейд, Т. Ю. Чанг и С. Йокояма: мобилизация внутриклеточного холестерина, участвующая в ABCA1 / аполипопротеин-опосредованной сборке липопротеинов высокой плотности в фибробластах. J Lipid Res , 45 (10), 1943-1951 (2004)

129. Y. Yamauchi, M. Hayashi, S. Abe-Dohmae и S. Yokoyama: Аполипопротеин AI активирует передачу сигналов протеинкиназы C-альфа для фосфорилирования и стабилизировать АТФ-связывающий кассетный транспортер A1 для сборки липопротеинов высокой плотности. J Biol Chem , 278 (48), 47890-47897 (2003)

130. R. S. Kiss, J. Maric и Y. L. Marcel: Отток липидов в макрофагальных клетках человека и мыши: доказательства дифференциальной регуляции оттока фосфолипидов и холестерина. J Lipid Res , 46 (9), 1877-1887 (2005)

131. Y. Wang и J. F. Oram: Ненасыщенные жирные кислоты фосфорилируют и дестабилизируют ABCA1 через дельта-путь протеинкиназы C. J Lipid Res , 48 (5), 1062-1068 (2007)

132.К. Танг, А. М. Воган, Г. М. Анантарамайя и Дж. Ф. Орам: киназа Януса 2 модулирует липидное, но не стабилизирующее белок взаимодействия амфипатических спиралей с ABCA1. J Lipid Res , 47 (1), 107-114 (2006)

133. C. Tang, Y. Liu, PS Kessler, AM Vaughan и JF Oram: Экспортер холестерина макрофагов ABCA1 действует как противовоспалительный рецептор. . J Biol Chem , 284 (47), 32336-32343 (2009)

134. Л. М. Уильямс, У. Сарма, К. Виллетс, Т.Смолли, Ф. Бреннан и Б. М. Фоксвелл: Экспрессия конститутивно активного STAT3 может воспроизводить цитокин-супрессивную активность интерлейкина-10 в первичных макрофагах человека. J Biol Chem , 282 (10), 6965-6975 (2007)

135. П. Дж. Мюррей: понимание и использование эндогенного противовоспалительного ответа, опосредованного интерлейкином-10 / STAT3. Curr Opin Pharmacol , 6 (4), 379-386 (2006)

136. X. Zhou, Z. Yin, X. Guo, DP Hajjar и J. Han: ингибирование ERK1 / 2 и активация печени X рецептор синергетически индуцирует экспрессию макрофагов ABCA1 и отток холестерина. J Biol Chem , 285 (9), 6316-6326 (2010)

137. JR Nofer, R. Feuerborn, B. Levkau, A. Sokoll, U. Seedorf и G. Assmann: Участие передачи сигналов Cdc42 в апоА -I-индуцированный отток холестерина. J Biol Chem , 278 (52), 53055-53062 (2003)

138. D. Gonsalvez, AH Ferner, H. Peckham, SS Murray и J. Xiao: роль передачи сигналов внеклеточных родственных киназ 1 и 2 при миелинизации ЦНС. Нейрофармакология (2015)

139. S. L. Fyffe-Maricich, A.Шотт, М. Карл, Дж. Красно и Р. Х. Миллер: передача сигналов через ERK1 / 2 контролирует толщину миелина во время восстановления миелина в центральной нервной системе взрослого человека. J Neurosci , 33 (47), 18402-18408 (2013)

140. Д. Лю, Л. Цзи, X. Тонг, Б. Пан, JY Han, Y. Huang, YE Chen, S. Pennathur, Y. Zhang и L. Zheng: Аполипопротеин AI человека индуцирует экспрессию циклооксигеназы-2 и высвобождение простагландина I-2 в эндотелиальных клетках через АТФ-связывающий кассетный транспортер A1. Am J Physiol Cell Physiol , 301 (3), C739-748 (2013)

141.J. Karwatsky, L. Ma, F. Dong и X. Zha: Отток холестерина к апоА-I в ABCA1-экспрессирующих клетках регулируется Ca2 + -зависимой передачей сигналов кальциневрина. J Lipid Res , 51 (5), 1144-1156 (2010)

142. Н. Ивамото, Р. Лу, Н. Танака, С. Абэ-Дохма и С. Йокояма: Кальмодулин взаимодействует с переносчиком связывающей кассеты АТФ. A1 для защиты от опосредованной кальпаином деградации и активации генерации липопротеинов высокой плотности. Артериосклер Тромб Vasc Biol , 30 (7), 1446-1452 (2010)

143.Y. Takahashi и J. D. Smith: Отток холестерина к аполипопротеину AI включает эндоцитоз и резекцию кальций-зависимым путем. Proc Natl Acad Sci USA , 96 (20), 11358-11363 (1999)

144. В. Мулай, П. Вуд, К. Рентеро, К. Энрич и Т. Гревал: Пути передачи сигналов предоставляют возможности для усиления ЛПВП и апоАИ-зависимый обратный транспорт холестерина. Curr Pharm Biotechnol , 13 (2), 352-364 (2012)

145. Y. Takai, T. Sasaki and T.Матодзаки: небольшие GTP-связывающие белки. Physiol Rev , 81 (1), 153-208 (2001)

146. К. Хирано, Ф. Мацуура, К. Цукамото, З. Чжан, А. Мацуяма, К. Такаиши, Р. Комуро, Т. Suehiro, S. Yamashita, Y. Takai и Y. Matsuzawa: Снижение экспрессии члена семейства Rho GTPase, Cdc42Hs, в клетках от болезни Танжера — небольшой G-белок может играть роль в оттоке холестерина. FEBS Lett , 484 (3), 275-279 (2000)

147. К. Цукамото, К. Хирано, С. Ямасита, Н.Сакаи, К. Икегами, З. Чжан, Ф. Мацуура, Х. Хираока, А. Мацуяма, М. Исигами и Ю. Мацузава: Замедленный внутриклеточный транспорт липидов, связанный со сниженной экспрессией Cdc42, члена Rho-GTPases, у человека состарившиеся фибробласты кожи: возможная функция Cdc42 в посредничестве внутриклеточного транспорта липидов. Arterioscler Thromb Vasc Biol , 22 (11), 1899-1904 (2002)

148. V. Pernet и M. E. Schwab: Роль Nogo-A в аксональной пластичности, повторном росте и восстановлении. Cell Tissue Res , 349 (1), 97-104 (2012)

149.М. Э. Шваб: Ного и регенерация аксонов. Curr Opin Neurobiol , 14 (1), 118-124 (2004)

150. Дж. Сильвер, М. Э. Шваб и П. Г. Попович: Регенеративная недостаточность центральной нервной системы: роль олигодендроцитов, астроцитов и микроглии. Cold Spring Harb Perspect Biol , 7 (3), a020602 (2014)

151. Y. Ohtake и S. Li: Молекулярные механизмы ингибиторов роста аксонов из рубцов. Brain Res (2014)

152. Дж. М. Крегг, М. А. ДеПол, А.Р. Филоус, Б. Т. Ланг, А. Тран и Дж. Сильвер: функциональная регенерация за пределами глиального рубца. Exp Neurol , 253, 197-207 (2014)

153. SC Gordts, I. Muthuramu, R. Amin, F. Jacobs и B. De Geest: Влияние липопротеинов на заживление ран: местная терапия HDL исправляет отсроченное Заживление ран у мышей с дефицитом аполипопротеина E. Pharmaceuticals (Basel) , 7 (4), 419-432 (2014)

154. AM Fagan, G. Bu, Y. Sun, A. Daugherty и DM Holtzman: Аполипопротеин E-содержащий липопротеин высокой плотности способствует росту нейритов. и является лигандом для белка, связанного с рецептором липопротеинов низкой плотности. J Biol Chem , 271 (47), 30121-30125 (1996)

155. AE Roher, CL Maarouf, LI Sue, Y. Hu, J. Wilson и TG Beach: маркеры спинномозговой жидкости, полученные при аутопсии. подтверждена болезнь Альцгеймера. Биомаркеры , 14 (7), 493-501 (2009)

156. JT Huang, L. Wang, S. Prabakaran, M. Wengenroth, HE Lockstone, D. Koethe, CW Gerth, S. Gross, D. Schreiber, K. Lilley, M. Wayland, D. Oxley, FM Leweke и S. Bahn: Независимые исследования профилей белков показывают снижение уровней аполипопротеина A1 в спинномозговой жидкости при шизофрении, головном мозге и периферических тканях. Mol Psychiatry , 13 (12), 1118-1128 (2008)

157. А. Пирилло, А. Л. Катапано и Г. Д. Нората: ЛПВП при инфекционных заболеваниях и сепсисе. Handb Exp Pharmacol , 224, 483-508 (2015)

158. NA Ramella, OJ Rimoldi, ED Prieto, GR Schinella, SA Sanchez, MS Jaureguiberry, ME Vela, ST Ferreira и MA Tricerri: человеческий аполипопротеин, производный от AI. амилоид: его связь с атеросклерозом. PLoS One , 6 (7), e22532 (2011)

159.А. Дж. Мерфи, Д. Драгольевич и А. Р. Толл: Пути оттока холестерина регулируют миелопоэз: потенциальная связь с измененной функцией макрофагов при атеросклерозе. Front Immunol , 5, 490 (2014)

160. W. Annema, A. von Eckardstein и P. T. Kovanen: HDL и атеротромботические сосудистые заболевания. Handb Exp Pharmacol , 224, 369-403 (2015)

161. Ю. Уэхара и К. Саку: Липопротеины высокой плотности и атеросклероз: роли переносчиков липидов. World J Cardiol , 6 (10), 1049-1059 (2014)

162.Д. Дж. Рейдер и Г. К. Ховинг: ЛПВП и сердечно-сосудистые заболевания. Lancet , 384 (9943), 618-625 (2014)

163.